猪苓的日文

• 固形寒天培地によりチョレイ菌を培養し、異なる培地、炭素由来、異なる窒素由来、温度によるチョレイ生長と菌糸状態に対する影響を測定し、さらに、２種類異なる培地においてチョレイ菌糸により産生したエルゴステロール類成分の差異を測定した。
  利用固体琼脂培养基对猪苓暗培养，观测不同培养基、不同碳源、不同氮源、不同温度对猪苓生长和菌丝形态的影响，并测定猪苓在两种不同培养基上菌丝产生猪苓酮类成分的差异．
• 方法：逆相蒸発法により猪苓多糖類の長循環リポソームを調合し、紫外分光光度法によりリポソーム中の猪苓多糖の封入率とドラックキャリアー率を測定し、透過型顕微鏡で形態を観察し、レーザーが散乱法により粒子径を測定し、遠心加速実験で安定性を調べた。
  方法：逆相蒸发法制备猪苓多糖长循环脂质体，采用紫外分光光度法测定脂质体中猪苓多糖的包封率和载药量，透射电镜观察形态，激光散射法测定粒径大小，离心加速实验考查稳定性。
• 方法：逆相蒸発法により猪苓多糖類の長循環リポソームを調合し、紫外分光光度法によりリポソーム中の猪苓多糖の封入率とドラックキャリアー率を測定し、透過型顕微鏡で形態を観察し、レーザーが散乱法により粒子径を測定し、遠心加速実験で安定性を調べた。
  方法：逆相蒸发法制备猪苓多糖长循环脂质体，采用紫外分光光度法测定脂质体中猪苓多糖的包封率和载药量，透射电镜观察形态，激光散射法测定粒径大小，离心加速实验考查稳定性。
• 方法：逆相蒸発法により猪苓多糖類の長循環リポソームを調合し、紫外分光光度法によりリポソーム中の猪苓多糖の封入率とドラックキャリアー率を測定し、透過型顕微鏡で形態を観察し、レーザーが散乱法により粒子径を測定し、遠心加速実験で安定性を調べた。
  方法：逆相蒸发法制备猪苓多糖长循环脂质体，采用紫外分光光度法测定脂质体中猪苓多糖的包封率和载药量，透射电镜观察形态，激光散射法测定粒径大小，离心加速实验考查稳定性。
• 方法：逆相蒸発法により猪苓多糖類の長循環リポソームを調合し、紫外分光光度法によりリポソーム中の猪苓多糖の封入率とドラックキャリアー率を測定し、透過型顕微鏡で形態を観察し、レーザーが散乱法により粒子径を測定し、遠心加速実験で安定性を調べた。
  方法：逆相蒸发法制备猪苓多糖长循环脂质体，采用紫外分光光度法测定脂质体中猪苓多糖的包封率和载药量，透射电镜观察形态，激光散射法测定粒径大小，离心加速实验考查稳定性。
• 方法：皮内注射ＩＩ型コラーゲン（ＣＯＬ―ＩＩ）を用いて、ＣＩＡラットモデルを樹立し、モデルラットのＰＰ結リンパ細胞（ＰＰＬ）、腸上皮内リンパ細胞（ＩＥＬ）と固有層リンパ球（ＬＰＬ）を分離し、それぞれ異なる濃度の人参多糖と猪苓多糖で４８時間を培養した後に、培養上清にＴＮＦ―αとＩＦＮ―γ量の変化を測定する。
  方法：采用皮内注射Ⅱ型胶原（ＣＯＬ―Ⅱ）建立ＣＩＡ大鼠模型，分离模型大鼠ＰＰ结淋巴细胞（ＰＰＬ）、肠道上皮内淋巴细胞（ＩＥＬ）和固有层淋巴细胞（ＬＰＬ），分别与不同浓度的人参多糖和猪苓多糖共培养４８ｈ后，检测培养上清中ＴＮＦ―α和ＩＦＮ―γ含量的变化。
• 方法：皮内注射ＩＩ型コラーゲン（ＣＯＬ―ＩＩ）を用いて、ＣＩＡラットモデルを樹立し、モデルラットのＰＰ結リンパ細胞（ＰＰＬ）、腸上皮内リンパ細胞（ＩＥＬ）と固有層リンパ球（ＬＰＬ）を分離し、それぞれ異なる濃度の人参多糖と猪苓多糖で４８時間を培養した後に、培養上清にＴＮＦ―αとＩＦＮ―γ量の変化を測定する。
  方法：采用皮内注射Ⅱ型胶原（ＣＯＬ―Ⅱ）建立ＣＩＡ大鼠模型，分离模型大鼠ＰＰ结淋巴细胞（ＰＰＬ）、肠道上皮内淋巴细胞（ＩＥＬ）和固有层淋巴细胞（ＬＰＬ），分别与不同浓度的人参多糖和猪苓多糖共培养４８ｈ后，检测培养上清中ＴＮＦ―α和ＩＦＮ―γ含量的变化。